-Оптимизация биолюминесцентной системы грибов для прикладных биоаналитических и биоимиджинговых технологий

Биолюминесценция — способность живых организмов излучать свет в видимом диапазоне. В ее основе лежит биохимическая реакция окисления субстрата люциферина кислородом под действием фермента люциферазы, сопровождающаяся испусканием света. Из примерно 40 известных биолюминесцентных систем только для нескольких из них были установлены структура люциферина и ген катализирующей его окисление люциферазы. Несмотря на небольшое число описанных люциферин-люциферазных пар (около 10), они были усовершенствованы и использованы для создания большого разнообразия люминесцентных инструментов для различных биомедицинских приложений (Shimomura and Yampolsky 2019). Так, одними из самых широко используемых являются люциферазы светлячка FLuc (Wood et al. 1984), Renilla RLuc (Cormier and Karkhanis 1971) и NanoLuc (Hall et al. 2012) ввиду их яркости и доступности вариантов этих систем разных цветов (Kaskova, Tsarkova, and Yampolsky 2016). Однако одним из недостатков использования данных люциферин-люциферазных пар является необходимость экзогенного добавления субстрата, что приводит к инвазивности проводимых исследований. Ранее в нашей лаборатории были изучены механизмы биолюминесценции высших грибов: установлены структуры люциферина грибов и его интермедиатов, а также ферменты, участвующие в их конверсии (Konstantin V. Purtov et al. 2015; Kaskova et al. 2017; Kotlobay et al. 2018). Данная биолюминесцентная система избавляет от экзогенного добавления субстрата и открывает новые возможности для проведения неинвазивного биоимиджинга in vivo в эукариотических организмах (Mitiouchkina et al. 2020). Однако несмотря на то, что биолюминесцентная система грибов является генетически кодируемой, испускаемый в результате реакции свет по яркости уступает другим широко используемым люциферин-люциферазным системам — светлячка, NanoLuc, Renilla (данные не опубликованы). Помимо этого, до сих пор отсутствуют варианты люциферин-люциферазной системы грибов разных цветов, которые можно было бы использовать для многоцветного люминесцентного биоимиджинга (Suzuki et al. 2016). Для создания более совершенных биолюминесцентных репортеров, пригодных для решения широкого ряда биотехнологических задач, необходима оптимизация биолюминесцентной системы грибов путем улучшения спектральных характеристик как субстрата (люциферина), так и фермента (люциферазы). Настоящий проект нацелен на оптимизацию люциферин-люциферазной системы грибов путем получения аналогов люциферина с улучшенными спектральными характеристиками, а также проведения направленной эволюции люциферазы гриба Neonothopanus nambi. Также мы планируем протестировать люциферазы из других светящихся грибов на возможность окислять люциферин грибов и его синтезированные в ходе проекта аналоги. Помимо этого, мы протестируем аналоги кофейной кислоты на возможность их использования ферментами биолюминесцентной системы грибов. Совместно с научной группой Абхиджита Де мы планируем показать эффективность улучшенной в ходе проекта люциферин-люциферазной системы грибов путем разработки биолюминесцентных инструментов для проведения имиджинга в культуре опухолевых клеток, исследования взаимодействия белков путем создания сенсоров, основанных на биолюминесцентном резонансном переносе энергии (bioluminescence resonance energy transfer, BRET), и проведения предклинических имиджинговых исследований in vivo.

List of publications

  1. Palkina KA, Balakireva AV, Belozerova OA, Chepurnykh TV, Markina NM, Kovalchuk SI, Tsarkova AS, Mishin AS, Yampolsky IV, Sarkisyan KS (2023). Domain Truncation in Hispidin Synthase Orthologs from Non-Bioluminescent Fungi Does Not Lead to Hispidin Biosynthesis. Int J Mol Sci 24 (2), 1317
  2. Mujawar A, Phadte P, Palkina KA, Markina NM, Mohammad A, Thakur BL, Sarkisyan KS, Balakireva AV, Ray P, Yamplosky I, De A (2023). Triple Reporter Assay: A Non-Overlapping Luciferase Assay for the Measurement of Complex Macromolecular Regulation in Cancer Cells Using a New Mushroom Luciferase–Luciferin Pair. Sensors (Basel) 23 (17),
  3. Shakhova ES, Karataeva TA, Markina NM, Mitiouchkina T, Palkina KA, Perfilov MM, Wood MG, Hoang TT, Hall MP, Fakhranurova LI, Alekberova AE, Malyshevskaia AK, Gorbachev DA, Bugaeva EN, Pletneva LK, Babenko VV, Boldyreva DI, Gorokhovatsky AY, Balakireva AV, Gao F, Choob VV, Encell LP, Wood KV, Yampolsky IV, Sarkisyan KS, Mishin AS (2024). An improved pathway for autonomous bioluminescence imaging in eukaryotes. Nat Methods 21 (3), 406–410
  4. Mujawar A, Dimri S, Palkina KA, Markina NM, Sarkisyan KS, Balakireva AV, Yampolsky IV, De A (2024). Novel BRET combination for detection of rapamycin-induced protein dimerization using luciferase from fungus Neonothopanus nambi. Heliyon 10 (4), e25553
  5. Barykin AD, Chepurnykh TV, Osipova ZM (2024). Deep learning in modelling the protein–ligand interaction: new pathways in drug development. Bulletin of Russian State Medical University  (1), 49–53
  6. Stevani CV, Zamuner CK, Bastos EL, Nóbrega BB, Soares DM, Oliveira AG, Bechara EJ, Shakhova ES, Sarkisyan KS, Yampolsky IV, Kaskova ZM (2024). The living light from fungi. Journal of Photochemistry and Photobiology C: Photochemistry Reviews 58,