Молекулярные технологии управления нейросигнализацией

В основе всех физиологических процессов, в том числе функционирования нервной системы, лежит меж- и внутриклеточная сигнализация. В межклеточной сигнализации важным шагом является восприятие внешнего сигнала, например, поступивших на поверхность клетки соединений (лигандов) с помощью специальных мембранных белков (рецепторов). Взаимодействие лиганда с рецептором вызывает серию конформационных перестроек последнего, в результате которых в клетке запускаются различные сигнальные каскады, ведущие в итоге к тому или иному физиологическому ответу. Связывание лиганда с белком-рецептором является первым и очень важным шагом. Управляя этой начальной стадией, можно повлиять на физиологический ответ – активировать его или затормозить. Несмотря на впечатляющее разнообразие структуры и функции мембранных рецепторов, начальная стадия распознавания ими своих специфичных лигандов определяется сравнительно небольшим набором факторов: особенностями пространственной организации, физико-химическими свойствами молекул-партнеров и их окружения, а также динамикой системы. Чтобы раскрыть молекулярные механизмы лиганд-рецепторного узнавания, необходимо выявить и количественно оценить указанные параметры. Таким образом, в настоящее время появляется возможность унификации рассматриваемого многообразия явлений, вне зависимости от конкретной биологической природы изучаемых молекул. Важнейшими характеристиками, играющими ключевую роль в процессе межмолекулярного взаимодействия, обладает поверхность молекул. Именно комплементарность локальных свойств поверхности часто является движущей силой образования комплекса. В настоящем проекте мы предлагаем разработать оригинальный метод анализа сложных молекулярных комплексов, основанный на расчете, картировании и визуализации различных физико-химических свойств поверхности рецепторов и связывающихся с ними лигандов. Важно, что создаваемая физическая модель не является статичной, она описывает процесс распознавания лигандов рецепторами на основе расшифровки и взаимной адаптации их динамических молекулярных «портретов». В качестве объектов исследования нами выбраны рецепторные системы, участвующие в формировании и передаче сигналов в нервной системе и представляющие разнообразные типы пространственной организации и способа активации: потенциал-зависимые калиевые и натриевые каналы, никотиновые ацетилхолиновые рецепторы, терморецепторы и кислото-чувствительные ионные каналы. Эти рецепторы (а) являются важными фармакологическими мишенями для разработки новых терапевтических агентов и (б) имеют специфичные лиганды пептидной природы, наиболее подходящие для исследования комплементарных взаимодействий с рецептором. Кроме того, (в) имеются данные о пространственной структуре указанных рецепторов и/или их лигандов, и (г) в коллективе заявителя разработаны эффективные системы для их изучения. Реализация проекта будет включать следующие основные этапы. (1) Для каждого из указанных типов рецепторных систем характерно широкое разнообразие известных и хорошо охарактеризованных лигандов. Необходима систематизация накопленных данных, которая позволит (2) провести надежный анализ взаимосвязи структура-функция для лигандов каждого типа рецепторов и предложить рабочую модель лиганд-рецепторного узнавания. (3) Проверка моделей будет осуществлена рациональным проектированием новых лигандов с заданным профилем специфичности. Кроме того, (4) будет проведен широкомасштабный скрининг активности известных соединений в отношении указанных рецепторов, а его результаты сопоставлены с моделями. В результате (5) будет выработан универсальный метод анализа систем лиганд-рецептор и (6) получен целый арсенал специфичных лигандов для управления нейросигнализацией. Актуальность проекта обусловлена двумя обстоятельствами. (а) Мембранные рецепторы служат мишенями множества лекарственных соединений, и их разработка ведется с учетом принципов лиганд-рецепторного взаимодействия. Новый метод позволит существенно улучшить эффективность разработки лекарств. (б) Современные исследования организации нервной системы на молекулярном уровне немыслимо без эффективных инструментов – специфичных лигандов нейрорецепторов. Проект направлен на получение такого инструментария. Научная новизна проекта состоит в использовании абсолютно новой методики компьютерного моделирования, а также в том, что с использованием расчетных и экспериментальных методов будет исследовано взаимодействие широкого круга имеющихся лигандов со всеми анализируемыми рецепторными мишенями. Будут выявлены универсальные механизмы распознавания молекулярных поверхностей, и как следствие, будет реализована возможность направленного воздействия на процессы нейросигнализации.

6 Января 2014 года — 31 Декабря 2016 года

Козлов С.А. (рук.)

Лаборатория нейрорецепторов и нейрорегуляторов

Грант, РНФ

Список публикаций по проекту

  1. Чугунов АО, Ефремов РГ (2014). Поверхность молекулы -- источник биологической информации.  (10), 3–10
  2. Osmakov DI, Koshelev SG, Andreev YA, Dyachenko IA, Bondarenko DA, Murashev AN, Grishin EV, Kozlov SA (2016). Conversed mutagenesis of an inactive peptide to ASIC3 inhibitor for active sites determination. Toxicon 116, 11–16
  3. Vulfius CA, Spirova EN, Serebryakova MV, Shelukhina IV, Kudryavtsev DS, Kryukova EV, Starkov VG, Kopylova NV, Zhmak MN, Ivanov IA, Kudryashova KS, Andreeva TV, Tsetlin VI, Utkin YN (2016). Peptides from puff adder Bitis arietans venom, novel inhibitors of nicotinic acetylcholine receptors. Toxicon 121, 70–76
  4. Kasheverov IE, Chugunov AO, Kudryavtsev DS, Ivanov IA, Zhmak MN, Shelukhina IV, Spirova EN, Tabakmakher VM, Zelepuga EA, Efremov RG, Tsetlin VI (2016). High-Affinity α-Conotoxin PnIA Analogs Designed on the Basis of the Protein Surface Topography Method. Sci Rep 6, 36848
  5. Manetti D, Bellucci C, Dei S, Teodori E, Varani K, Spirova E, Kudryavtsev D, Shelukhina I, Tsetlin V, Romanelli MN (2016). New quinoline derivatives as nicotinic receptor modulators. Eur J Med Chem 110, 246–258
  6. Pletnev VZ, Pletneva NV, Efremov RG, Goryacheva EA, Artemyev IV, Arkhipova SF, Sarkisyan KS, Mishin AS, Lukyanov KA, Pletnev SV (2016). Three-dimensional structure of a pH-dependent fluorescent protein WasCFP with a tryptophan based deprotonated chromophore. Russ. J. Bioorganic Chem. 42 (6), 612–618
  7. Skobtsova LA, Dyachenko IA, Andreev YA, Logashina YA, Murashev AN, Grishin EV (2016). Effect of polypeptides from sea anemone Heteractis crispa on the rodent blood pressure, heart rate, and hemostasis. Dokl Biol Sci 470 (1), 228–230
  8. Chugunov AO, Volynsky PE, Krylov NA, Nolde DE, Efremov RG (2016). Temperature-sensitive gating of TRPV1 channel as probed by atomistic simulations of its trans- and juxtamembrane domains. Sci Rep 6, 33112
  9. Vulfius CA, Starkov VG, Andreeva TV, Tsetlin VI, Utkin YN (2015). Novel antagonists of nicotinic acetylcholine receptors—proteins from venoms of Viperidae snakes. Dokl Biochem Biophys 461 (1), 119–122
  10. Ribeiro EDA, Pinotsis N, Ghisleni A, Salmazo A, Konarev PV, Kostan J, Sjöblom B, Schreiner C, Polyansky AA, Gkougkoulia EA, Holt MR, Aachmann FL, Žagrović B, Bordignon E, Pirker KF, Svergun DI, Gautel M, Djinović-Carugo K (2014). The structure and regulation of human muscle α-Actinin. Cell 159 (6), 1447–1460
  11. Pluzhnikov KA, Kozlov SA, Vassilevski AA, Vorontsova OV, Feofanov AV, Grishin EV (2014). Linear antimicrobial peptides from Ectatomma quadridens ant venom. Biochimie 107 (PB), 211–215
  12. Dubovskii PV, Vassilevski AA, Kozlov SA, Feofanov AV, Grishin EV, Efremov RG (2015). Latarcins: Versatile spider venom peptides. Cell Mol Life Sci 72 (23), 4501–4522
  13. Kudryavtsev DS, Shelukhina IV, Son LV, Ojomoko LO, Kryukova EV, Lyukmanova EN, Zhmak MN, Dolgikh DA, Ivanov IA, Kasheverov IE, Starkov VG, Ramerstorfer J, Sieghart W, Tsetlin VI, Utkin YN (2015). Neurotoxins from snake venoms and α-Conotoxin ImI inhibit functionally active Ionotropic γ-aminobutyric acid (GABA) receptors. J Biol Chem 290 (37), 22747–22758
  14. Kudryavtsev D, Shelukhina I, Vulfius C, Makarieva T, Stonik V, Zhmak M, Ivanov I, Kashevero I, Utkin Y, Tsetlin V (2015). Natural compounds interacting with nicotinic acetylcholine receptors: From low-molecular weight ones to peptides and proteins. Toxins (Basel) 7 (5), 1683–1701
  15. Kasheverov IE, Kudryavtsev DS, Ivanov IA, Zhmak MN, Chugunov AO, Tabakmakher VM, Zelepuga EA, Efremov RG, Tsetlin VI (2015). Rational design of new ligands for nicotinic receptors on the basis of α-conotoxin PnIA. Dokl Biochem Biophys 461 (1), 106–109
  16. Kasheverov IE, Shelukhina IV, Kudryavtsev DS, Makarieva TN, Spirova EN, Guzii AG, Stonik VA, Tsetlin VI (2015). 6-Bromohypaphorine from marine nudibranch mollusk Hermissenda crassicornis is an agonist of human α7 nicotinic acetylcholine receptor. Mar Drugs 13 (3), 1255–1266
  17. Osmakov DI, Koshelev SG, Belozerova OA, Kublitski VS, Andreev YA, Grishin EV, Kozlov SA (2015). Biological activity of sevanol and its analogues. Russ. J. Bioorganic Chem. 41 (5), 543–547
  18. Mikov AN, Kozlov SA (2015). Structural features of cysteine-rich polypeptides from sea anemone venoms. Russ. J. Bioorganic Chem. 41 (5), 455–466
  19. Mikov AN, Fedorova IM, Potapieva NN, Maleeva EE, Andreev YA, Zaitsev AV, Kim KK, Bocharov EV, Bozin TN, Altukhov DA, Lipkin AV, Kozlov SA, Tikhonov DB, Grishin EV (2015). ω-Tbo-IT1-New Inhibitor of Insect Calcium Channels Isolated from Spider Venom. Sci Rep 5, 17232